肉毒堿棕櫚酰轉移酶（CPT-1）試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

肉毒堿棕櫚酰轉移酶是存在于線粒體內膜的一類酰基轉移酶。可逆地催化從酰基fu酶 A 將酰基轉移至L-肉毒堿的反應，在轉運脂肪酸通過線粒體內膜的過程中起重要作用。

測定原理：

基于肉堿和脂酰fu酶A 在丙二酰fu酶A 存在與否的條件下，通過肉堿脂酰轉移酶(CPT-I)的作用，產生脂酰肉堿，并釋放出巰基fu酶A(COA-SH)，與Ellman 試劑DN-TB 反應后，產生黃色的 TNB。通過其吸收峰值得變化（412nm），來定量分析CPT-1 的活性。

肉毒堿棕櫚酰轉移酶試劑盒 脂肪酸系列

組成：

自備儀器和用品：

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1ml 玻璃比色皿、研缽、冰、無水乙醇和蒸餾水

具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準

樣本的前處理：

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離：

稱取約 0.1g 組織或收集 500 萬細胞，加入 1ml 試劑一和 10uL 試劑三，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。將勻漿液于 600g，4℃離心 5min。

棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11000g，4℃離心 10min。

上清液即胞漿提取物，可用于測定從線粒體泄漏的 CPT-1（此步可選做）。

在步驟④的沉淀中加入 200uL 試劑二和 2uL 試劑三，超聲波破碎（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3 秒，間隔 10 秒，重復 30 次），用于線粒體 CPT-1 測定。

測定步驟：

1、分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 412nm，蒸餾水調零。

2、樣本測定

（1） 在試劑五中加入 2ml 無水乙醇，混勻，再加入 44ml 試劑四，混勻，37℃（哺乳動物）或 25℃（其它物種）孵育 5min；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融；

（2） 在試劑六中加入 2ml 蒸餾水，混勻，37℃（哺乳動物）或 25℃（其它物種）孵育 5min；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融；

（3） 在 1ml 玻璃比色皿中加入 40μl 樣本、880μl 試劑五和 40μl 試劑六，混勻，記錄 412nm 處 20 秒時的初始吸光度A1 和 2 分 20 秒時的吸光度 A2，計算ΔA=A2-A1。

CPT-1 活性計算：

（1） 按樣本蛋白濃度計算：

單位的定義：每mg 組織蛋白每分鐘催化產生 1 nmol TNB 定義為一個酶活力單位。 CPT-1（nmol/min/mg prot）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(V 樣×Cpr) ÷T=880×ΔA÷Cpr此法需要自行測定樣本蛋白質濃度。

（2） 按樣本鮮重計算：

單位的定義：每g 組織每分鐘催化產生 1 nmol TNB 定義為一個酶活力單位。

CPT-1（nmol/min/g 鮮重）=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷（W× V 樣÷V 樣總）÷T=177.8×ΔA÷W

（3） 按細菌或細胞密度計算：

單位的定義：每 1 萬個細菌或細胞每分鐘催化產生 1 nmol TNB 定義為一個酶活力單位。

CPT-1（nmol/min/10⁴ cell）=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷（500×V 樣÷V 樣總）÷T=0.3556×ΔA

V 反總：反應體系總體積，9.6×10^-4 L；ε：TNB 摩爾消光系數，1.36×10⁴ L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm； V 樣：加入樣本體積，0.04 ml；V 樣總：加入提取液體積，0.202 ml；T：反應時間，2 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g；500：細胞或細菌總數，500 萬。

肉毒堿棕櫚酰轉移酶試劑盒 脂肪酸系列